關(guān)于 ITC 技術(shù)的問與答

1、N值是不是一般都是1左右？N值是一個(gè)很大的負(fù)值是否正常？

答：ITC中的N值表示化學(xué)計(jì)量比，它取決于分子相互作用自身的性質(zhì)。1:1結(jié)合的相互作用一般較多，所以多數(shù)分子互作的N值都是1，關(guān)于這類結(jié)合的研究也比較透徹。但是，當(dāng)?shù)鞍咨虾袃蓚€(gè)結(jié)合位點(diǎn)，或者蛋白由多個(gè)相同亞基組成時(shí)，N值可能更高。當(dāng)N值遠(yuǎn)小于1，多數(shù)情況下反映出被滴定物的活性濃度（活性構(gòu)象等）遠(yuǎn)低于100%。N值為負(fù)值不正常。

2、參比池放純水、緩沖會對實(shí)驗(yàn)結(jié)果有不同影響嗎？

答：在ITC實(shí)驗(yàn)中，對于水相體系的樣品而言（如常見的生物緩沖體系或者含10%以下有機(jī)溶劑如DMSO的體系），參比池一般只放脫過氣的純水并定期更換，不放緩沖液。參比池的作用是作為溫度的參照。做ITC的Control實(shí)驗(yàn)(如滴定劑滴buffer)則需要單獨(dú)做一次滴定，這時(shí)參比池為水，樣品池為buffer。

3、有沒有軟件可以模擬預(yù)實(shí)驗(yàn)，從而大致確定濃度？

答：PEAQ-ITC控制軟件中可以進(jìn)行多種模型的ITC實(shí)驗(yàn)?zāi)M，如單套位點(diǎn)模型、兩套位點(diǎn)模型等，其模擬過程需要用戶輸入一些參數(shù)如大致的親和力范圍、化學(xué)計(jì)量比，濃度，C值等，可以作為大家學(xué)習(xí)的工具。如果使用其他型號的儀器如ITC200，則在Origin擬合界面有一個(gè)simulation的按鈕可以進(jìn)行模擬。

4、DMSO是否會影響aptamer的識別能力？

答：DMSO作為助溶的有機(jī)溶劑在常用5-10%的濃度條件下一般不會影響分子間識別。但是，由于ITC測定是表觀吸放熱，我們需要確保滴定針和樣品池中均含有濃度一致的DMSO從而消除背景熱量。對于某些生物分子而言，一定濃度的DMSO有可能對分子構(gòu)象和熱穩(wěn)定性造成影響，從而導(dǎo)致構(gòu)象的局部展開和非特異性結(jié)合的發(fā)生。因此，需要對DMSO環(huán)境下的生物分子穩(wěn)定性做一些分析，如通過DSC以及光散射技術(shù)等。

5、核酸和蛋白互作，哪個(gè)放cell中？

答：ITC是一種平衡實(shí)驗(yàn)，通過檢測因分子間相互作用吸收或者放出的熱量來計(jì)算相關(guān)的熱力學(xué)參數(shù)。ITC沒有分子量限制，樣品放置的原則通常由互作分子的價(jià)態(tài)、可用量、穩(wěn)定性等決定。一般多價(jià)態(tài)的分子放在樣品池比較有利于分析，具有較高濃度且穩(wěn)定的樣品作為滴定針的物質(zhì)。對于1:1反應(yīng)而言，我們更建議大家在樣品允許的情況下，既做正向滴定也做反向滴定（Reverse Titration）進(jìn)行交互驗(yàn)證。

6、儀器能加熱Decon-90嗎？還是自己手動加熱？

答：用14% (v/v)的Decon-90清洗液加熱泡洗樣品池是一種非常有效去除生物聚集體和沉淀物的方法。對于PEAQ-ITC的用戶，選擇Soak即可實(shí)現(xiàn)自動加熱泡洗和純水清洗；對于ITC 200和VP-ITC的用戶，需要手動將Decon-90加入樣品池并調(diào)整其溫度至50-60℃，浸泡20分鐘后執(zhí)行Wash (long)操作進(jìn)行樣品池清洗。

7、能否根據(jù)KD值知道小分子與蛋白是弱結(jié)合，強(qiáng)結(jié)合，還是不結(jié)合？如果可以的話，具體的范圍是多少呀？

答：這個(gè)問題的答案并不只有一個(gè)，通常根據(jù)經(jīng)驗(yàn)來確定。一般來說，我們認(rèn)為nM級別左右的親和力屬于強(qiáng)結(jié)合；μM級別左右的親和力屬于中等強(qiáng)度結(jié)合；mM級別左右的親和力屬于弱結(jié)合。各種強(qiáng)度親和力之間的界限并不絕對，相互會有交疊。小分子與蛋白質(zhì)結(jié)合力的親和力范圍非常廣，有的親和力較弱，在幾百μM；有的親和力較強(qiáng)，在pM。

8、蛋白和藥物的濃度一般怎么選擇？

答：蛋白和藥物的濃度選擇在ITC實(shí)驗(yàn)中一般要根據(jù)兩種分子結(jié)合的大致親和力KD來進(jìn)行估算。若您手頭有IC50，SPR（表面等離子體共振），GCI (光柵耦合干涉)等實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)，您可以將它用作預(yù)估KD的參考，并基于C值來設(shè)計(jì)ITC實(shí)驗(yàn)。如果沒有任何參考數(shù)據(jù)，建議首先嘗試200 μM藥物滴定20 μM蛋白的條件。

9、遇到始終滴不到飽和的樣品應(yīng)該怎么辦？

答：ITC滴定曲線的形態(tài)取決于分子間互作的親和力。對于具有中等偏弱親和力的分子互作，我們會得到無法滴定到飽和的ITC結(jié)果。這很正常。對于滴定不到飽和的樣品，您可以首先做滴定物滴buffer的Control實(shí)驗(yàn)以確認(rèn)是否有背景放熱；對于背景放熱較小的滴定，提高滴定物與被滴定物的濃度比例通常可以更好的看到信號飽和的趨勢；您也可以連續(xù)滴定2-3個(gè)ITC結(jié)果，比如：實(shí)驗(yàn)一、A滴B；實(shí)驗(yàn)二、A滴 實(shí)驗(yàn)一滴定完樣品池中A/B混合樣品，然后通過Concat軟件（在Malvern Panalytical網(wǎng)站上下載）將兩次ITC實(shí)驗(yàn)的滴定結(jié)果連接起來作為一個(gè)實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行分析。在分析不飽和數(shù)據(jù)時(shí)，通常需要固定化學(xué)計(jì)量比N值，如1。（請根據(jù)分子結(jié)合的生物學(xué)背景進(jìn)行N值的確認(rèn)）

10、樣品濃度，參數(shù)設(shè)置，還有哪些注意事項(xiàng)？

答：這幾項(xiàng)內(nèi)容在講座中介紹的比較清楚，請參考視頻中“如何做好一個(gè)ITC實(shí)驗(yàn)"部分。